DOI:10.20047/j.issn1673-7210.2025.25.34
中图分类号:R541.4
周淑慧, 赵嫄, 裴娟, 张正义
| 【作者机构】 | 兰州大学第二医院全科医学科; 兰州大学第二医院医院工会 | 
| 【分 类 号】 | R541.4 | 
| 【基 金】 | 甘肃省科技计划项目(22JR4ZA101、23YFFA0039)。 | 
急性心肌梗死(acute myocardial infarction,AMI)是冠状动脉急性、持续性缺血缺氧引起的心肌细胞损伤坏死,是冠心病的一种严重类型,具有发病急、病死率高及预后不良的特点。心力衰竭是AMI后常见的严重并发症之一,其发生率和死亡率较高,AMI后心力衰竭的发生率为20%~30%,且在老年患者、合并糖尿病或慢性肾病的患者中更常见[1]。对接受经皮冠状动脉介入治疗的AMI患者,仍有近25%的AMI患者出院后1年内发展为心力衰竭,极大增加死亡风险[2]。尽管近年来关于AMI和心力衰竭的治疗策略取得显著进展,但预后结局仍不理想。AMI治疗的关键目标在于通过早期精准风险分层识别高危心力衰竭患者,阻断或延缓AMI后心力衰竭的发生和发展,以改善患者长期预后及生活质量。
目前的临床指南推荐对AMI患者进行早期风险评估,但临床风险评分和生物标志物(如肌钙蛋白、脑钠肽、超敏C反应蛋白)在预测AMI后心力衰竭方面存在局限性[3]。S100A8/A9是近年来发现对AMI后心力衰竭具有预测价值的新型标志物。本文阐述S100A8/A9作为一种潜在的生物标志物,在AMI后心力衰竭中的研究进展,并探讨以S100A8/A9为靶点的治疗策略及其前景,旨在为临床早期诊断和治疗AMI后心力衰竭提供新思路。
钙结合蛋白S100蛋白家族最初于1965年在牛脑组织中被发现,根据其在饱和硫酸铵溶液中的溶解度分为21个亚型,每个亚型由1个基因编码,仅在脊椎动物中表达[4]。这些亚型分为S100A、S100B、S100G、S100P、S100Z和S100PBP 6类,其中S100A最多,有16个已确定的成员。S100A8/A9是由S100A8(髓系相关蛋白8/钙粒蛋白A)和S100A9(髓系相关蛋白14/钙粒蛋白B)组成的异源二聚体。在正常生理状态下,S100A8/A9通过调节细胞内钙离子稳态、免疫反应及细胞凋亡等机制维持细胞和组织的正常生理功能。在病理状态下,S100A8/A9的异常表达可能导致炎症反应过度激活、细胞损伤和组织功能障碍,参与多种疾病的发病机制,如AMI、心力衰竭、炎症性疾病和自身免疫性疾病等。
在正常生理状态下,S100蛋白亚型能通过EF手结构域与钙离子结合,调节细胞内钙离子稳态,影响信号传导、代谢活动及细胞骨架稳定性[5]。S100A9磷酸化调节MAPK信号转导通路,形成(S100A8/A9)2四聚体[6]。(S100A8/A9)2四聚体以钙依赖性方式促进微管聚合和重组,增强吞噬细胞向内皮细胞迁移,调控细胞骨架动力学和迁移功能的作用[7]。
在病理状态下,炎症反应中S100A8/A9是Toll样受体(Toll-like receptor,TLR)4和晚期糖基化终末产物受体(advanced glycation end product receptor,AGER)的内源性配体,其通过与TLR4和AGER相互作用,激活ERK和NF-κB信号通路,上调促炎性细胞因子和趋化因子表达[8-9]。该受体结合与信号传导过程对白细胞募集和炎症反应放大至关重要。在线粒体功能障碍中,S100A8/A9通过多种机制引起线粒体功能障碍,最终导致心肌细胞死亡。S100A8/A9通过与NADPH氧化酶复合物中的p67phox和Rac结合,激活NADPH氧化酶,进一步促进活性氧的大量生成,过量的活性氧可破坏线粒体膜电位,诱导线粒体通透性转换孔开放。线粒体通透性转换孔的开放进一步导致线粒体肿胀和细胞色素c释放,细胞色素c释放激活胱天蛋白酶依赖的细胞凋亡途径,最终引发心肌细胞死亡与心脏功能恶化[10]。在细胞凋亡与自噬中,S100A8/A9的作用具有明显的浓度依赖性和细胞类型特异性,见图1[11]。低浓度时,可能通过激活保护性信号通路抑制凋亡;高浓度时,则倾向于诱导凋亡,S100A8/A9既可维持细胞稳态,又可过度激活导致自噬性损伤[12]。这种双重作用使其在细胞生死平衡中起重要作用,具体效应需结合微环境综合判断。
 
    图1 S100A8/A9在心肌细胞中的病理生理机制
AMI后,S100A8/A9通过多重机制参与心肌损伤及修复的动态调控。S100A8/A9是炎症级联反应的调控枢纽,通过激活TLR4和AGER信号通路,诱导促炎性细胞因子(如肿瘤坏死因子-α、白细胞介素-6)释放,调节炎症反应的强度和持续时间,促炎作用有助于清除坏死组织,但过度炎症反应可能加重心肌损伤[13];S100A8/A9是心肌纤维化的使动因素,在损伤修复阶段,S100A8/A9通过p38 MAPK信号通路激活心脏成纤维细胞,促进Ⅰ/Ⅲ型胶原蛋白合成及基质金属蛋白酶抑制物表达,导致病理性纤维化进程,降低心室顺应性[13];S100A8/A9还可通过抑制线粒体复合体Ⅰ活性,降低腺苷三磷酸合成效率并增加电子漏,引发氧化应激损伤,在缺血再灌注模型中,这种线粒体功能障碍与Bax/Bcl-2升高及胱天蛋白酶-3活化显著相关,提示其通过内源性凋亡通路加剧心肌细胞死亡[14];S100A8/A9对自噬呈现双向调节,生理浓度下通过AMPK/mTOR信号通路维持自噬流稳态,病理浓度则导致LC3-Ⅱ异常堆积及p62降解受阻,诱发自噬溶酶体系统崩溃[13]。S100A8/A9通过炎症-纤维化-细胞死亡的病理生理机制参与AMI的进展。与脑钠肽主要反映心室壁应力不同,S100A8/A9直接关联于心肌损伤和炎症的核心过程,可能提供更直接的损伤信息。
AMI的心肌损伤包括两个阶段:最初的炎症反应阶段和随后的修复阶段[15]。在AMI早期,随着炎症反应的启动和免疫细胞的激活,S100A8/A9在细胞外的浓度达到高峰,该现象与心肌细胞和内皮细胞的损伤密切相关。在AMI的后期,炎症细胞的持续浸润和激活,心肌细胞凋亡和纤维化过程的持续存在,S100A8/A9的表达水平虽有所下降,但仍维持在较高水平。其早期峰值提示作为损伤预警早期标志物的可能性,持续高水平则暗示其在心脏重构和向心力衰竭进展中的持续作用,为临床干预提供更长的潜在时间窗。
AMI后心力衰竭的发生涉及复杂病理生理过程,包括心肌损伤、心脏重构、神经内分泌系统激活及炎症反应,这些机制相互作用最终导致心功能进行性恶化心力衰竭的发生。心肌细胞丢失与心脏重构被认为是AMI后心力衰竭的核心病理机制,贯穿于疾病全程,是导致心脏功能不可逆损伤的关键因素[16]。心肌梗死后,大量心肌细胞因缺血缺氧坏死,由于心肌细胞的再生能力有限,坏死区域逐渐被纤维化瘢痕组织替代,这削弱心脏的收缩能力,也导致心脏结构改变,进一步加重心脏负担,影响心脏泵血功能。炎症反应作为心肌损伤的关键促进因素,虽非直接诱因,但可通过显著加剧心肌损伤与心脏重构,促进心力衰竭的发生与进展[17]。炎症反应过程中释放的免疫细胞在清除坏死组织时,释放更多的炎症介质和蛋白酶,破坏心肌细胞和细胞外基质,从而促进心肌损伤和心脏重构加重。
S100A8/A9是预测AMI后心力衰竭的潜在生物标志物。研究显示,AMI患者血清中S100A8/A9水平与心肌损伤严重程度相关[18]。其与心肌损伤的正相关性提示S100A8/A9可能作为心力衰竭的早期预警指标。近期研究通过蛋白质组学分析和孟德尔随机化方法发现,S100A8/A9是AMI后心力衰竭的预测生物标志物,具有因果效应,可改善传统风险因素的心力衰竭风险评估[19]。提示S100A8/A9水平变化可作为评估预后和指导临床治疗的潜在指标。还有机制研究深入探讨S100A8/A9参与AMI的发生和发展过程。研究显示,使用细胞分选和流式细胞术从小鼠梗死心脏中分离白细胞,确定中性粒细胞是S100A8/A9的主要来源[20]。靶向破坏S100A9基因的小鼠模型支持S100A8/A9是心肌梗死诱导的粒细胞生成上游调节因子的观点,其中S100A9基因缺失或ABR-215757对S100A8/A9的药理学抑制显著限制粒细胞生成,减少循环和心脏中性粒细胞和单核细胞的数量,减轻炎症反应,从而起到改善心脏功能的作用。S100A8/A9通过激活炎症信号通路、诱导氧化应激及调节细胞凋亡和自噬等机制,加剧心肌损伤和心脏功能障碍[10]。这为S100A8/A9应用于AMI后心力衰竭的早期预测和靶向干预提供理论依据。
目前用于检测S100A8/A9水平的技术方法主要包含酶联免疫吸附试验、免疫印迹、流式细胞术等。酶联免疫吸附试验基于抗原-抗体特异性结合原理,将S100A8/A9特异性抗体固定于固相载体,利用酶标记二抗检测,经酶促反应显色定量,灵敏度高、特异性好,适用于大规模样本,但存在抗体交叉反应风险。免疫印迹用于检测特定蛋白质,通过电泳分离后转移到膜上,再用特异性抗体检测并通过化学发光或荧光显色定量。该方法能提供蛋白质分子量信息,适合检测表达与修饰状态,但操作复杂、耗时较长,需大量样本与抗体,且灵敏度相对较低。流式细胞术借助荧光标记抗体与细胞内S100A8/A9结合,通过激光激发荧光后由流式细胞仪检测信号实现定量分析,可同时检测多参数,适合单细胞水平分析,灵敏度高,可检测低丰度蛋白质,但设备复杂、需专业操作人员且样本处理要求高、成本大。在准确性方面,酶联免疫吸附试验和免疫印迹较高,流式细胞术在单细胞水平需严格控制条件下具有较高的准确性;在灵敏度上,流式细胞术和酶联免疫吸附试验较高,而免疫印迹适合高丰度蛋白质检测;在特异性上,3种方法均依赖抗体质量与特异性。
为确保检查结果的可比性和准确性,需建立标准化的检测流程,使S100A8/A9的检测从实验室走向临床,为临床诊疗提供可靠依据。
虽然一些基础实验已证明炎症反应介导的心肌损伤是AMI发展中的重要事件,但在关于抗炎策略治疗AMI的临床试验中,并未显示出明显效果,甚至对AMI的治疗产生负面影响[21]。该矛盾现象提示,必须寻找既能有效调控炎症反应,又能促进组织修复的新型治疗靶点。近年来,S100A8/A9作为一种促炎警报素因其独特的生物学特性而备受关注。在心肌梗死后,坏死细胞和活化的中性粒细胞可大量释放S100A8/A9,其进入循环系统的时间甚至早于传统心肌损伤标志物。S100A8/A9通过结合AGER和TLR4受体,作为损伤相关分子显著加剧炎症反应[22-23]。基于这些发现,研究人员开发多种靶向S100A8/A9的创新治疗策略。
在小分子抑制剂方面,Paquinimod通过阻断S100A9与TLR4的结合,抑制炎症反应,在肺纤维化小鼠模型中,该药不仅能减轻肺纤维化和炎症细胞浸润,还可抑制内皮-间充质转化的过程[24]。提示Paquinimod可能是一种有潜力的靶向S100A8/A9用于治疗心肌梗死和心力衰竭的候选药物。另一款口服制剂ABR-238901则通过抑制S100A8/A9与AGER/TLR4的相互作用,在动物实验中展现出显著的心肌保护作用,特别是在心肌梗死早期给药时,既能减轻炎症损伤,又可促进修复性微环境的形成[25-26]。然而,长期治疗可对修复产生负面影响,可能是由于修复性巨噬细胞活性降低[27]。提示确定S100A9治疗AMI时间窗的最佳时机迫切需要,治疗策略可能需要在损伤早期炎症高峰时进行强效抑制,在修复期则需精细调控(如降低剂量、选择特异性靶点或联用促修复药物),以避免干扰必要的修复过程。
在生物制剂研发方面,抗S100A8/A9单克隆抗体因其能特异性中和S100A8/A9的促炎作用具有广阔前景,然而由于S100A8/A9存在同源和异源二聚体等多种形式,给抗体药物开发带来一定挑战。
同时基因治疗技术如RNA干扰技术通过siRNA/shRNA沉默S100A8基因表达,在动物实验模型中展现出良好的减轻炎症和氧化应激的效果[28]。
这些创新疗法正逐步向临床转化,有望为心肌梗死和心力衰竭的治疗开辟新途径,在心血管疾病的治疗中有广阔的应用前景。
S100A8/A9作为AMI后发生心力衰竭的预测生物标志物,显示出较高的灵敏度和特异度,且优于传统生物标志物[29]。然而,因样本量、群体特征、检测方法及混杂因素的调整不同导致其灵敏度和特异度不同。虽然有研究通过孟德尔随机化分析等方法提示S100A8/A9可能与AMI后心力衰竭存在因果关联[19]。但现有研究存在样本量不足和群体单一性局限,需通过多中心前瞻性队列进一步验证。S100A8/A9在临床实际应用中的可行性仍面临挑战。如检测S100A8/A9水平需要一定的设备、试剂和技术的支持。S100A8/A9浓度依赖性效应有治疗时间窗的挑战,在现有研究中,S100A8/A9的测定仅在入院时进行,可能需在经皮冠状动脉介入治疗术后、出院时、出院后进行多次测量以捕捉更多变异。关于S100A8/A9的靶向治疗仍需进一步临床试验评估其安全性和有效性。
因此推动多中心合作,建立标准化的S100A8/A9检测流程,结合大型前瞻性队列的纵向监测及多组学(如蛋白组、代谢组)整合分析,深入研究因果关联机制,选择多个时间点进行多次采样及进行靶向药物的临床研究,评估其安全性、药代动力学和在患者体内的效果信号很有必要。
目前S100A8/A9在AMI后心力衰竭中的预测价值得到初步验证,靶向S100A8/A9的治疗策略显示出一定潜力。期待未来能对S100A8/A9在心血管系统中的功能和作用机制进行深入研究,并开展更多高质量的临床试验,进一步验证S100A8/A9的预测价值和治疗效果,为精准预测和靶向治疗提供更坚实的理论基础。
利益冲突声明:本文所有作者均声明不存在利益冲突。
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