DOI:10.20047/j.issn1673-7210.2025.34.36
中图分类号:R56
李静蕾, 李龙, 罗敬轩, 杨浩东
| 【作者机构】 | 兰州大学第一临床医学院; 兰州大学第一医院呼吸与危重症医学科 |
| 【分 类 号】 | R56 |
| 【基 金】 |
肺纤维化(pulmonary fibrosis,PF)是以进行性肺实质瘢痕形成为核心病理特征的致命性间质性肺病,其典型病理改变为成纤维细胞异常活化、细胞外基质过度沉积、肺泡结构不可逆重塑。临床表现为进行性加重的呼吸困难与干咳,终末期常因呼吸衰竭致死。流行病学数据显示,PF好发于65岁以上有长期吸烟史的老年男性,患者确诊后中位生存期3~5年,预后极差[1]。PF的治疗手段有限,虽然第一代抗纤维化药物吡非尼酮和尼达尼布于10多年前在全球范围内被批准用于治疗PF,被证明能在一定程度上延缓疾病进展,但无法逆转已形成的纤维化病变或显著改善长期生存结局[2]。因此,深入探索PF的发病机制,寻找更有效的治疗新靶点,是目前面临的重要挑战。研究显示,内质网应激(endoplasmic reticulum stress,ERS)广泛参与多种肺部疾病的病理进程,包括慢性阻塞性肺疾病、肺部感染、PF和肺癌等[3]。ERS在PF中呈现持续性高激活,通过调控肺泡上皮细胞损伤、成纤维细胞活化、巨噬细胞极化、上皮-间充质转化等过程驱动纤维化进展,已被证实是PF的核心机制。本文系统梳理近年来ERS在PF中的研究进展,旨在为PF可能治疗靶点提供新理论依据。
内质网是由小管和片状结构构成的连续膜网络系统,作为真核细胞中分布最广泛的膜性细胞器,其在膜生物发生中发挥核心作用。内质网的主要功能包括蛋白质合成和运输、新生肽链的正确折叠、脂质生物合成、钙离子储存和氧化还原平衡[4]。在生理状态下,内质网通过高效折叠蛋白质,并清除错误折叠蛋白,维持细胞内环境稳态,当细胞遭遇缺氧、乳酸、活性氧积累、缺乏生长信号、氨基酸供应不足、葡萄糖剥夺等病理刺激时,内质网蛋白质折叠能力受损,导致ERS[5]。
为恢复稳态,细胞启动核心调控机制——未折叠蛋白反应,在哺乳动物中,未折叠蛋白反应通过3条关键通路协同执行,即PERK、IRE1和ATF6信号通路。三者均为内质网跨膜传感器,其激活受分子伴侣免疫球蛋白重链结合蛋白(binding immunoglobulin protein,BIP)精密调控,生理状态下,BIP结合内质网跨膜传感器的管腔结构使通路保持失活状态;ERS发生时,BIP因对错误折叠蛋白暴露的疏水性结构域亲和力更高而与之优先结合,导致传感器解离并激活,未折叠蛋白反应具有双重效应,早期阶段通过抑制蛋白合成、增强分子伴侣表达等实现保护效应,从而恢复稳态;若应激持续未缓解,则转为损伤效应,通过促进细胞凋亡、炎症反应及促纤维化信号,推动疾病进展[6]。
PERK是一种Ⅰ型内质网跨膜蛋白,PERK在ERS时与BIP解离,解离后的PERK形成寡聚体,并通过反式自磷酸化激活,活化的PERK进而磷酸化eIF2α,导致mRNA翻译整体减少,从而减轻内质网蛋白折叠负荷[7]。eIF2α 还可选择性地增强促进ATF4的翻译,其通过调控分子伴侣表达、抗氧化基因等发挥初期保护作用,然而在持续ERS条件下,ATF4可进一步激活促凋亡分子CHOP的表达,CHOP通过上调促凋亡基因诱导细胞死亡[8]。尽管CHOP上调在终末未折叠蛋白反应及凋亡诱导中起关键作用,但近年来研究发现其在特定微环境(如轻度ERS或代谢重塑时)可通过激活内质网自噬等途径促细胞存活[9]。
IRE1α 是一种高度保守的Ⅰ型内质网跨膜蛋白。其具有蛋白激酶活性和核糖核酸内切酶活性。当ERS触发BIP解离后,IRE1发生寡聚化和自磷酸化激活,这种构象变化可激活IRE1α 的核糖核酸内切酶结构域,选择性地剪切X盒结合蛋白1(X-box binding protein l,XBP1)的一部分mRNA,生成具有高度转录活性的XBP1,IRE1α/XBP1信号通路调控的基因可促进错误折叠蛋白质的清除,恢复蛋白质稳态[10]。此外,IRE1α 寡聚化可引发调节性IRE1依赖性衰变,其内切酶活性非选择性降解内质网膜附着mRNA,抑制蛋白质合成以减轻内质网压力[11]。ERS持续或严重时,IRE1信号发生病理性转化,调节性IRE1依赖性衰变途径过度激活可导致生存必需蛋白mRNA降解,此外,IRE1还可激活促凋亡C-Jun氨基端激酶,最终触发细胞死亡[12]。
ATF6是一种Ⅱ型内质网跨膜蛋白,其C端位于内质网腔内具有应激感知结构域,在细胞质N端具有碱性亮氨酸拉链结构域[13]。在ERS触发下,ATF6与分子伴侣BIP解离,并易位到高尔基体中,经蛋白酶S1P和S2P切割,释放其胞质结构域作为转录激活因子转位到细胞核,通过其碱性亮氨酸拉链结构域结合DNA激活参与维持蛋白质折叠机制的多个靶基因,包括BIP、XBP1等,XBP1的激活将ATF6和IRE1信号通路串联起来,协同增强蛋白质折叠能力与错误折叠蛋白清除效率,共同维持内质网稳态[14]。
肺泡上皮细胞主要负责维持肺泡屏障的完整性,肺泡上皮细胞持续损伤是PF的起始环节。研究显示,PF患者肺泡上皮细胞中各种ERS标志物如ATF4、ATF6、CHOP、BIP和XBP1等表达上调[15]。Jing等[16]研究显示,在PF中,ERS诱导的CHOP通过激活NF-κB信号通路,显著上调肺泡Ⅱ型上皮细胞中p53蛋白、细胞周期蛋白依赖性激酶抑制因子1、细胞周期蛋白依赖性激酶抑制剂2A等衰老标志物表达,并促使细胞分泌白细胞介素-6、单核细胞趋化蛋白-1等促纤维化因子,加剧肺组织纤维瘢痕形成。Hong等[17]通过构建肺泡Ⅱ型上皮细胞特异性ERS模型显示,ERS通过激活核苷酸结合寡聚结构域样受体蛋白(nucleotide-binding oligomerization domain-like receptors protein,NLRP)炎症小体,诱导肺泡Ⅱ型上皮细胞焦亡,从而驱动PF进展,同时ERS激活的cAMP/PKA信号通路可抑制该过程,该通路失调可加剧纤维化。Sun等[18]研究显示,在PF微环境中,乳酸累积可通过PERK-ATF4-CHOP轴激活促凋亡因子胱天蛋白酶-12以诱导肺泡Ⅱ型上皮细胞凋亡,破坏肺泡再生能力。综上所述,ERS是PF中肺泡上皮细胞损伤的共同通路,通过介导多重细胞死亡模式协同破坏肺泡再生屏障,进而促进PF,为开发新的治疗策略提供理论依据。
成纤维细胞异常激活是PF的核心病理特征,ERS可通过多重机制驱动该过程。Yang等[19]研究显示,ERS诱导的CHOP可通过旁分泌机制促进肺泡Ⅱ型上皮细胞分泌Sonic Hedgehog,激活成纤维细胞的Hedgehog信号通路,导致成纤维细胞活化和细胞外基质沉积,阻断Sonic Hedgehog/Hedgehog信号可减少成纤维细胞活化,从而减轻PF。Druso等[20]研究显示,PF中的内质网氧化应激可通过谷胱甘肽依赖性机制诱导胶原蛋白1A1第447位半胱氨酸发生特异性磺酸化修饰,使其从结构蛋白转化为病理性信号分子,这种修饰胶原通过激活成纤维细胞表面整合素受体β1 及其下游FAK/PI3K/Akt信号通路,驱动成纤维细胞持续性活化。Zhang等[21]在PF患者中检测到细胞外热休克蛋白90α 显著高表达,通过构建博来霉素诱导的小鼠PF模型发现,热休克蛋白90α 水平升高可诱导肺成纤维细胞ERS,并通过激活PI3K/Akt信号通路促进成纤维细胞活化,使用热休克蛋白90α中和抗体、ERS抑制剂或PI3K/Akt抑制剂干预,均能显著减轻纤维化程度。综上所述,ERS可能通过旁分泌信号、细胞外基质修饰及应激蛋白等多途径促进成纤维细胞活化,从而加速PF进展。
巨噬细胞分为间质巨噬细胞和肺泡巨噬细胞,是PF进程中的关键调控细胞[22]。ERS在巨噬细胞功能失调机制中发挥关键作用。Yuan等[23]通过结晶二氧化硅暴露模型发现,结晶二氧化硅暴露可诱导巨噬细胞发生ERS,通过激活BIP-CHOP信号轴,促进间质巨噬细胞募集并向促纤维化的M1样表型极化;这些活化的巨噬细胞高表达主要组织相容性复合体Ⅱ类分子及促炎性细胞因子如肿瘤坏死因子-α、白细胞介素-1β前体等,形成以间质巨噬细胞为主导的促炎微环境,驱动PF进展。Ma等[24]研究显示,二氧化硅诱导的Wnt5a/Ca2+信号通过ERS介导的氧化还原失衡,抑制铁死亡负调控因子的表达,促进巨噬细胞铁死亡,并释放促纤维化因子如转化生长因子(transforming growth factor,TGF)-β 等。Mekhael等[25]观察到髓系ATF6α缺失可抑制ERS诱导的CHOP表达,减少巨噬细胞凋亡,导致CD11b+炎症性巨噬细胞蓄积,这些细胞通过分泌胶原及促炎性细胞因子,最终加剧纤维化,该发现为靶向ATF6α/CHOP信号通路清除致病性巨噬细胞以干预PF提供新依据。
上皮-间充质转化是PF中肌成纤维细胞积聚的关键动态过程,其特征为肺泡上皮细胞丢失上皮标志物如E-钙黏蛋白,并获得间充质表型如平滑肌肌动蛋白α、波形蛋白[26]。Zhu等[27]研究显示,促纤维化因子Nogo-B在PF中表达上调,其通过激活ERS的PERK分支,形成Nogo-B-PERK-ATF4正反馈环,通过下调上皮标志物表达、上调间充质标志物表达驱动上皮-间充质转化及细胞外基质沉积,从而加剧PF。Auyeung等[28]阐明PF发生时,ERS激活IRE1α 信号通路,其剪切XBP1生成活性形式XBP1,导致肺上皮祖细胞增殖受损,并向促纤维化表型分化,从而驱动该细胞群体发生上皮-间充质转化。Luo等[29]研究显示,间充质干细胞可通过分泌活性因子抑制ERS中IRE1α 磷酸化,有效阻断TGF-β1诱导的肺泡上皮细胞发生上皮-间充质转化,抑制肌成纤维细胞转化,最终减轻肺组织胶原沉积,并改善PF症状,该发现为基于间充质干细胞调控ERS干预上皮-间充质转化治疗PF提供新思路。
除上述机制外,ERS还可通过与线粒体功能障碍、氧化应激、自噬等途径交互作用,共同促进PF的发生和发展。
Knoell等[30]通过构建博来霉素诱导小鼠PF模型发现,PACS2-TRPV1轴在ERS时介导内质网-线粒体接触位点形成,促进Ca2+从内质网向线粒体异常流动,引发线粒体钙超载;钙超载进一步诱导线粒体通透性转换孔开放,激活NF-κB、TGF-β/Smad信号通路及NLRP3炎症小体,驱动肺泡上皮细胞间质化转变及成纤维细胞活化;关键干预实验显示,PACS2缺失或TRPV1抑制可减少线粒体相关内质网膜数量、降低胶原沉积,PF患者肺组织中PACS2与TRPV1表达显著上调与纤维化程度正相关,提示靶向PACS2-TRPV1轴可通过阻断内质网-线粒体异常钙信号传导干预PF进程。
Fu等[31]利用1-硝基芘刺激肺泡上皮细胞发现,该环境毒物通过激活NADPH氧化酶NOX4及干扰线粒体电子传递链,引发活性氧爆发,过量活性氧氧化内质网分子伴侣如BIP,并破坏钙稳态,触发ERS;ERS通过PERK/ATF4、IRE1α/XBP1信号通路促进纤维连接蛋白沉积,驱动肺泡上皮细胞间质化转变;活性氧-ERS协同激活NF-κB、TGF-β/Smad3信号通路,促进成纤维细胞活化与胶原沉积,最终介导PF进展。
自噬是细胞清除错误折叠蛋白和受损细胞器的重要机制,但其与ERS的交互作用在PF中具有双重性。自噬通常起保护性作用,ERS通过激活IRE1α/XBP1或PERK/ATF4信号通路,诱导自噬相关基因5、7表达,清除ERS产生的错误折叠蛋白以减轻细胞损伤[32];然而,持续ERS可导致自噬功能障碍并转向促纤维化,在PM2.5 暴露模型中观察到,ERS诱导的自噬可促使陷窝蛋白-1降解,解除其对TGF-β1/Smad3信号通路的抑制,激活肌成纤维细胞并促进细胞外基质沉积,最终导致PF发生[33]。
综上所述,ERS并非独立作用,而是通过与线粒体功能障碍、氧化应激和自噬失调形成协同网络,共同驱动PF。因此,未来研究应更深入探索这一交互网络中的关键节点,以期开发出多靶点干预策略,从而实现对PF的有效干预。
脱氢紫堇碱是从延胡索中提取的季铵生物碱,具有抗炎、抗氧化应激和抗肿瘤的药理特性。He等[34]通过体内、外实验显示,脱氢紫堇碱可抑制ERS相关的IRE1α/PERK信号通路,降低活性氧水平,阻断TGF-β/Smad信号传导,抑制成纤维细胞向肌成纤维细胞转化,并减少胶原沉积,从而减轻PF。仙茅苷是从仙茅中提取的活性化合物,具有免疫调节、抗氧化、抗衰老等作用。Xie等[35]研究显示,仙茅苷可通过上调SIRT1和增强Trim72介导的P300泛素化降解,解除抗氧化酶的乙酰化抑制,从而提高其活性。该过程可抑制ERS标志物表达,减少白细胞介素-6、TNF-α等衰老相关因子释放,延缓肺泡上皮细胞与成纤维细胞衰老,从而减轻PF。
厚朴酸是提取自中药茯苓的三萜类化合物。Li等[36]通过构建博来霉素大鼠PF模型并给予厚朴酸灌胃治疗发现,厚朴酸可显著减轻大鼠肺水肿、纤维化及组织病理损伤,其机制可能与抑制ERS、改善线粒体功能及抗氧化能力相关。萝卜硫素是十字花科植物中硫代葡萄糖苷的代谢产物,也是一种食源性的Nrf2信号通路激活剂。张群等[37]研究显示,萝卜硫素可显著减轻肺组织纤维化程度,其机制为激活Nrf2信号通路,抑制BIP和CHOP的表达,减轻未折叠蛋白反应,从而保护肺泡上皮细胞和内皮细胞免于凋亡,阻断纤维化启动信号。
Wang等[38]研究显示,柑橘碱性提取物可通过调控ATF3/PINK1信号通路减轻PF;从机制上,该提取物能激活ATF3并抑制PINK1表达,降低ERS标志物水平,减少肺泡Ⅱ型上皮细胞凋亡,进而抑制PF。综上所述,中药及天然合成物通过调控ERS展现出治疗PF的巨大潜力。与西药比较,其天然活性成分兼具抗炎、抗氧化、抗凋亡和抗纤维化等多重药理作用,体现出整体调节的优势。然而其仍面临成分复杂、代谢过程不明确、生物利用度低及机制研究依赖动物模型等挑战,未来研究仍需进一步深入探索。
目前多种西药及合成药被证实可通过抑制ERS发挥抗PF效应。氟非尼酮是一类新型抗纤维化剂。谢鸿[39]研究显示,氟非尼酮可通过抑制炎症反应与ERS改善纤维化,其作用机制在于靶向TLR4/NF-κB信号通路减轻炎症,并抑制ERS,从而减少肺泡Ⅱ型上皮细胞与巨噬细胞ERS相关凋亡。贝尼地平是一种二氢吡啶类钙离子通道阻滞剂。崔艳红等[40]在博来霉素诱导小鼠PF模型中发现,经灌胃给药贝尼地平可逆转博来霉素引起的小鼠肺功能减退,其机制为通过缓解钙通道介导的内质网钙稳态失衡减轻ERS。牛磺熊去氧胆酸是一种具有伴侣特性的胆汁酸,也是ERS抑制剂。Tong等[41]研究显示,牛磺熊去氧胆酸可通过阻断ERS减少肺泡上皮细胞损伤,从而减轻PF。Baek等[42]通过体内实验显示,博来霉素可显著诱导肺泡上皮细胞凋亡,并上调ERS相关介质表达;给予亚精胺则能有效抑制这种凋亡及ERS相关通路的激活。恩格列净是一种钠-葡萄糖协同转运蛋白2抑制剂,在PF中具有保护潜力。El-Horany等[43]研究显示,恩格列净可激活Sesn2/AMPK/Nrf2信号通路,抑制铁死亡和ERS,并调节自噬过程,最终减少胶原沉积、减轻PF。综上所述,西药及合成药物在PF治疗中显示出较高的机制特异性,但目前绝大多数证据仍来源于临床前研究,其对人体的有效性和安全性尚需通过严格的临床试验加以验证,并有待进一步探索其与传统抗纤维化药物联合应用的潜力。
针对ERS的分子靶向干预,已成为PF治疗研究新方向。研究显示,Bcl-2可通过调控IRE1α 活化减轻ERS和PF,其机制在于Bcl-2与BAX结合,阻断BAX与IRE1α 相互作用,抑制肺组织中间充质细胞和上皮细胞中IRE1α 的激活,从而减轻ERS,并促进胶原降解以缓解PF[44]。Dong等[45]研究显示,Sestrin2通过调控NRF2/ATF4信号通路抑制ERS依赖性铁死亡,从而改善PF。其机制为Sestrin2激活NRF2并抑制ATF4表达,下调ERS标志物及铁死亡相关蛋白,同时上调抗氧化蛋白及铁死亡抑制因子,减少肺泡上皮细胞中铁依赖性脂质过氧化损伤,最终减轻肺组织炎症与纤维化。Zhang等[46]研究显示,环氧二十碳三烯酸通过激活Trim25/Keap1/Nrf2信号轴抑制ERS,进而减轻PF;该分子促进Trim25介导的Keap1泛素化降解,并促进Nrf2进入细胞核发挥抗氧化作用,由此抑制ERS以缓解肺泡上皮细胞衰老。Zhan等[47]通过体内实验显示,血小板反应蛋白-1与细胞膜受体CD47结合后,可激活NADPH氧化酶介导的活性氧生成,诱导ERS关键标志物及磷酸化PERK的异常表达,促进成纤维细胞活化及TGF-β、IL-6等促纤维化因子的释放,使用血小板反应蛋白-1抑制剂或CD47抑制剂治疗可显著减轻博来霉素诱导的ERS和PF。洪侨辉[48]在衣霉素处理肺泡上皮细胞和博来霉素诱导的小鼠PF模型中发现,cAMP/PKA信号通路可通过负反馈抑制ERS诱导的NLRP3炎症小体活化及其下游焦亡信号,减少肺泡Ⅱ型上皮细胞焦亡及促炎性细胞因子释放,从而减轻肺损伤及纤维化。综上所述,通过靶向ERS中的不同关键分子通路,能多层面抑制ERS及其下游纤维化信号,是缓解PF的有效策略,但目前该领域研究仍处于起步阶段,尚需深入开展进一步探索。
PF的发病率正逐年攀升,其病因复杂、预后不良,且治疗选择有限,迫切需要寻找新治疗靶点。近年来,ERS在PF的发生和发展中起重要作用,其主要通过诱导肺泡上皮细胞衰老与凋亡、促进成纤维细胞活化、调控巨噬细胞极化、驱动上皮-间充质转化,并与线粒体功能障碍、氧化应激、自噬等细胞过程形成复杂交互网络,共同推动疾病进展。靶向ERS可能成为PF治疗的新策略,目前已发现多种干预手段显示出潜在治疗价值,包括中药及天然化合物(如脱氢紫堇碱、仙茅苷等)、西药及合成药物(如氟非尼酮、贝尼地平、牛磺熊去氧胆酸等),以及针对IRE1α、ATF4等分子靶点的精准干预,这些治疗通过不同途径缓解ERS,抑制纤维化进程,为PF治疗带来新希望。
然而,该领域仍面临一定的挑战:①ERS参与PF的具体分子机制尚未完全明确,相关研究仍较有限,需进一步深入探索其在疾病发生和发展中的具体作用机制。②目前多数研究仍局限于细胞和动物实验阶段,缺乏临床数据支持。将这些基础研究成果转化为临床适用疗法仍面临重大挑战。③ERS抑制剂的器官特异性、长期安全性及药代动力学特性仍有待系统评价。此外,ERS与线粒体应激、氧化应激等其他途径的交互作用需更全面研究。未来应积极推进ERS靶向药物与现有抗纤维化药物的联合治疗临床转化研究,通过强化基础与临床研究融合,ERS靶向治疗策略有望为PF患者提供新有效途径。
利益冲突声明:本文所有作者均声明不存在利益冲突。
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Research progress on endoplasmic reticulum stress in pulmonary fibrosis
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