DOI:10.20047/j.issn1673-7210.2026.25061417
中图分类号:R34
谭炳卓1, 江姗姗2, 蔺全友1, 曹钰1, 梁月光2, 孙善斌2
| 【作者机构】 | 1安徽中医药大学第二临床医学院; 2安徽中医药大学第二附属医院康复科 |
| 【分 类 号】 | R34 |
| 【基 金】 | 安徽省高等学校科学研究项目(2023AH050804) 安徽省中医药传承创新科研项目(2024CCCX254) 国家优势专科康复科建设项目(国中医药医政函〔2024〕90号) 安徽中医药大学第二附属医院人才支持计划(杏林计划)项目(院发〔2023〕118号)。 |
脊髓损伤(spinal cord injury,SCI)是临床上常见致残率高、死亡率高的疾病,常导致脊髓损伤节段以下瘫痪、感觉异常或缺失、神经源性膀胱以及肠道功能障碍等[1-3]。SCI后的继发性损伤会引起脊髓氧化应激、神经元凋亡、联级炎症反应等,是造成人体功能障碍的重要因素[4-5]。研究发现,抑制PI3K/Akt信号通路后,SCI后神经元凋亡减少,能促进神经元的修复[6-7]。而微小RNA(microRNA,miRNA)通过靶向基因,抑制转录后基因表达,参与细胞增殖、凋亡、分化等过程[8-9]。其中miR-520c-3p通过Akt和NF-κB信号通路的RELA靶向调控血管内皮细胞的增殖、凋亡和黏附[10]。但miR-520c-3p能否通过PI3K/Akt通路调控SCI后神经元凋亡目前尚鲜见相关报道。因此本研究聚焦于miR-520c-3p,探究其是否通过调控PI3K/Akt通路参与SCI后神经元凋亡的进程,以此为SCI治疗提供新策略。
10只健康雄性SPF级SD大鼠,出生4 d内,体重(20±5)g,购自河南斯克贝斯生物科技股份有限公司[实验动物合格证号:NO.41000000000000009400,许可证号:SCXK(豫)2020-0005]。标准饲养于安徽中医药大学动物房内,12 h间隔照明,自由进食饲料和水,恒温25 ℃,相对湿度40%。无菌条件下分离脊髓组织,经0.25%胰蛋白酶消化后,接种于含10%胎牛血清的DMEM培养基,于37 ℃、5%CO2 培养箱中扩增至3~5代备用,用于后续实验。本研究已通过安徽中医药大学动物伦理委员会批准(AHUCM-rats-2024085)。
PI3K抑制剂LY294002(美国MedChemexpress生物科技公司,货号:HY-10108)。Lip2000(赛默飞世尔科技公司,货号:L3000-015);抗体(一抗)PI3K、p-PI3K、Akt、P-Akt(江苏亲科生物研究中心有限公司,货号:AF6241、AF3241、AF6261、AF0016)。β-actin、标记山羊抗小鼠IgG、辣根酶标记山羊抗兔IgG(北京中杉金桥生物技术有限公司,货号:23431-1-AP、ZB-2305、ZB-2301)。双荧光素酶试剂盒(派克生物科技有限公司,货号:FL001)。AnnexinV-FITC/PI双染细胞凋亡检测试剂盒(增强型)(兰杰柯科技有限公司,货号:BL107B)。电泳系统、凝胶成像仪[伯乐生命医学产品(上海)有限公司];化学发光成像系统(杭州申花科技有限公司);酶标仪[美谷分子仪器(上海)有限公司];流式细胞仪(美国贝克曼库尔特有限公司);Real-time PCR仪(霍夫曼-罗氏有限责任公司)。
使用H2O2 对脊髓神经元细胞进行处理,构建细胞氧化损伤模型,方法参照文献[11]的实验方法。在96孔板中接种细胞悬液。将培养板放在培养箱中预培养24 h(37 ℃,5%CO2)。取H2O2 标准溶液(1 000 μg/ml)1 ml加入10 ml培养基配置成100 μg/ml工作液,然后梯度稀释成50.000、25.000、12.500、6.250、3.125μg/ml。每个浓度6个复孔。取出96孔板,更换培养基,培养48 h。使用细胞CCK8法对各浓度梯度的细胞进行活性检测,得出脊髓神经元细胞氧化损伤模型H2O2 溶液的最适浓度。以下各组细胞进行氧化损伤处理均使用该浓度H2O2 溶液。
正常组:正常培养;H2O2 组:采用最适浓度H2O2处理48 h构建氧化损伤模型;miR-NC组:转染阴性对照siRNA 48 h后,添加H2O2 处理48 h建立氧化损伤模型;miR-520c-3p组:转染miR-520c-3p mimics48h后,添加H2O2 处理48 h进行氧化损伤;LY294002组:20 μmol/L PI3K抑制剂预处理1 h后进行氧化损伤,后续方法同miR-NC组;miR-520c-3p+LY294002组:联合转染与抑制剂处理后进行氧化损伤,后续方法同miR-NC组。各实验重复3次。
收集密度合适的各组细胞系,加入500μl的Binding Buffer悬浮细胞;加入5 μl Annexin V-FITC混匀后,加入5 μl Propidium Iodide,混匀;室温、避光、反应5~15 min;在1 h内,进行流式细胞仪的观察和检测细胞凋亡。
将细胞离心沉淀至管底,加500 μl单去污剂裂解液裂(含PMSF)裂解,然后置于冰上。用移液器将裂解液移至1.5 ml离心管中,4 ℃裂解30 min,其间摇晃数次。4 ℃,12 000 r/min离心10 min,取上清分装于1.5 ml离心管中并置于-70 ℃保存。裂解液裂解后提取各组SCN细胞蛋白,电泳分离,转印PVDF膜,封闭、分别加一抗PI3K(1∶1 000)、p-PI3K(1∶1 000)、Akt(1∶1 000)、p-Akt(1∶1 000)、β-actin(1∶2 000)过夜摇床孵育,鼠二抗(1∶10 000)室温孵育,洗膜,显影;对目的蛋白相对表达量进行分析。
使用TRI Reagent裂解细胞,经氯仿分层、异丙醇沉淀、75%乙醇洗涤后,用DEPC水溶解RNA并于-70 ℃保存。cDNA合成,先以gDNA digester去除基因组DNA,再用Hifair Ⅱ1st Strand cDNA Synthesis Kit进行逆转录,反应程序为25 ℃,5 min;42 ℃,30 min;85 ℃,5 min,产物于-80 ℃保存。扩增体系为10 μl,含SYBR Green qPCR Mix 5 μl、正反向引物各0.5 μl、cDNA模板1 μl及ddH2O 3 μl,反应程序为95 ℃预变性3 min,随后95 ℃,15 s;60 ℃,30 s循环40次。结果采用2-ΔΔCt 法计算相对表达量。引物序列见表1。
表1 引物序列
采用TargetScanv 8.0数据库对miR-520c-3p的靶点进行预测,确定miR-520c-3p和PIK3CA之间存在结合位点后,使用双荧光素酶报告基因法检测miR-520c-3p和PIK3CA的靶向关系。实验分为pPGK-NC+NC组:共转染空载体pPGK-NC与阴性对照NC;pPGK-NC+miR-520c-3p组:共转染空载体pPGK-NC与miR-520c-3p mimics;PIK3CA-WT+NC组:共转染PIK3CA 3’UTR野生型载体与阴性对照NC;PIK3CA-WT+miR-520c-3p组:共转染PIK3CA 3’UTR野生型载体与miR-520c-3p mimics;PIK3CA-MUT+NC组:共转染PIK3CA 3’UTR突变型载体与阴性对照NC;PIK3CAMUT+miR-520c-3p组:共转染PIK3CA 3’UTR突变型载体与miR-520c-3p mimics。每组设3个复孔。将细胞转染后裂解,配制萤火虫荧光素酶和海肾荧光素酶反应液,平衡至室温。取20 μl上述细胞裂解上清,加入96孔板中。加入萤火虫荧光素酶反应液,震板混匀,检测萤火虫荧光素酶活性,加入海肾荧光素酶反应液,震板混匀,检测海肾荧光素酶活性。
采用SPSS 25.0统计学软件与GraphPad Prism 9软件进行数据处理。计量资料采用均数±标准差(
)表示,多组间比较采用单因素方差分析(one-way ANOVA),进一步两两比较采用SNK-q检验。以P<0.05为差异有统计学意义。
根据计算H2O2 的IC50 值为47.857 μg/ml。选取47.85 μg/ml为H2O2 处理的浓度,即取4.785 ml的过氧化氢标准溶液加入95.215 ml培养基中为工作液。见图1。
图1 CCK8检测细胞H2O2 溶液处理的最适浓度(n=6)
与正常组比较,H2O2 组细胞凋亡率上升(P<0.05);与H2O2 组比较,miR-520c-3p组、LY294002组细胞凋亡率降低(P<0.05);与miR-520c-3p组、LY294002组比较,miR-520c-3p+LY294002组细胞凋亡率降低(P<0.05)。见图2~3。
图2 流式细胞术测定脊髓神经元细胞凋亡
图3 各组脊髓神经元细胞凋亡率比较(n=3)
与正常组比较,aP<0.05;与H2O2 组比较,bP<0.05;与miR-520c-3p组比较,cP<0.05;与LY294002组比较,dP<0.05。
与正常组比较,H2O2 组PI3K、p-PI3K、Akt、p-Akt蛋白表达水平升高(P<0.05);与H2O2 组比较,miR-520c-3p组、LY294002组中PI3K、p-PI3K、Akt、p-Akt蛋白表达水平降低(P<0.05);与miR-520c-3p组比较,miR-520c-3p+LY294002组中PI3K、p-PI3K、Akt、p-Akt蛋白表达水平降低(P<0.05);与LY294002组比较,miR-520c-3p+LY294002组中p-PI3K、Akt、p-Akt蛋白表达水平降低(P<0.05)。见图4~5。
图4 Western blot蛋白条带
图5 各组PI3K、p-PI3K、Akt、p-Akt蛋白表达水平比较(n=3)
与正常组比较,aP<0.05;与H2O2 组比较,bP<0.05;与miR-520c-3p组比较,cP<0.05;与LY294002组比较,dP<0.05。
与正常组比较,H2O2 组细胞中的Bcl-2 mRNA表达量下降,Caspase-9、FasLmRNA表达量上升(P<0.05);与H2O2 组比较,miR-520c-3p组细胞中的miR-520c-3p、Bcl-2 mRNA表达量升高,Caspase-9、FasL的mRNA表达量降低,而LY294002组中的Bcl-2 mRNA表达量升高,Caspase-9、FasL的mRNA表达量下降(P<0.05);与miR-520c-3p组比较,miR-520c-3p+LY294002组Bcl-2、miR-520c-3p mRNA表达量升高,Caspase-9、FasL的mRNA表达量降低(P<0.05);与LY294002组比较,miR-520c-3p+LY294002组miR-520c-3p的mRNA表达量升高(P<0.05)。见图6。
图6 各组细胞中miR-520c-3p及相关凋亡因子相对基因表达水平比较(n=3)
与正常组比较,aP<0.05;与H2O2 组比较,bP<0.05;与miR-520c-3p组比较,cP<0.05;与LY294002组比较,dP<0.05。
经过基因预测发现miR-520c-3p与PIK3CA之间存在结合位点,miR-520c-3p可在PIK3CA基因3’UTR的第182~189位形成典型的8mer类型结合位点,其context++score为-0.27。双荧光素酶报告实验中,与pPGK-NC+NC组比较,PIK3CA-WT+miR-520c-3p组共转双荧光素酶活性比值显著下调(P<0.01),而pPGKNC+miR-520c-3p组、PIK3CA-WT+NC组、PIK3CAMUT+NC组 及PIK3CA-MUT+miR-520c-3p组的活性无显著变化,证实miR-520c-3p可特异性结合PIK3CA 3’UTR野生型序列,见图7。
图7 miR-520c-3p和PIK3CA的靶向关系
A:miR-520c-3p和PIK3CA的结合位点;B:双荧光素酶检测结果。与PPGK-NC+NC组比较,aaP<0.01。
SCI后的继发性损伤后会出现大量神经元细胞凋亡,会导致人体出现肢体相关的功能性障碍[12-13]。研究发现,过表达miR-520c-3p能够促进细胞增殖,抑制细胞凋亡[14]。此外,miR-520c-3p可能通过激活PI3K/ Akt/NF-κB信号传导,影响细胞的增殖与凋亡的进程[15]。本研究结果显示,经过PI3K抑制剂的干预后,LY294002组中miR-520c-3p的mRNA表达水平低于miR-520c-3p组;与miR-520c-3p组比较,miR-520c-3p+LY294002组中PI3K、p-PI3K、Akt、p-Akt的蛋白表达量均降低,提示miR-520c-3p可能抑制PI3K/Akt轴的信号传导。本研究通过生物信息学手段分析了miR-520c-3p与PIK3CA的靶向关系,miR-520c-3p的seed区与PIK3CA 3’UTR182-189nt区域形成完整8mer配对,其配对区域结合能低,结合稳定性良好,提示该结合具有一定的功能抑制潜力。为此,本研究通过双荧光素酶报告实验进一步验证了该靶向关系,实验结果显示,miR-520c-3p显著抑制PIK3CA野生型3’UTR构建体的荧光活性,验证了miR-520c-3p可特异性靶向PIK3CA。以上提示miR-520c-3p可能通过该靶点影响PI3K/Akt通路活性,参与脊髓神经元细胞的凋亡调节过程。
Akt是一种丝氨酸苏氨酸激酶,是PI3K的下游效应器,可调节神经元分化与增殖和抑制神经元凋亡,促进SCI后神经元修复[16-17]。尽管PI3K/Akt通路在神经保护中已被广泛报道,但既往研究多聚焦于通路激动剂,或间接调控miRNA[18-19]。虽有研究发现miR-29a可靶向PIK3CA抑制宫颈癌细胞增殖[20];但尚未在神经损伤模型中验证,且目前尚未有关于miR-520c-3p与PIK3CA的靶向关系的相关报道。本研究结果显示,经过氧化损伤后miR-520c-3p+LY294002组细胞凋亡率最低,提示使用miR-520c-3p和PI3K抑制剂干预,可以使PI3K/Akt信号通路抑制脊髓神经元细胞凋亡。PIK3CA基因编码的蛋白是PI3K的核心催化亚基,其可以激活下游的Akt/mTOR信号通路,促进细胞生长和抑制凋亡[21]。通过双荧光素酶检测发现,miR-520c-3p可以靶向PIK3CA,可能间接调节PI3K/Akt信号通路,实现对脊髓神经元细胞增殖、凋亡等生命进程的影响,不过其中具体机制还需进一步研究。研究发现,miRNA-134-5p调控PI3K/Akt信号通路后,导致p-Akt水平降低,下游Bcl-2蛋白表达减少,细胞凋亡比例上升[22-23]。
FasL为一种可介导细胞凋亡的膜蛋白,当磷酸化Akt下调FasL的表达后,会下调Fas介导的凋亡途径[24]。Caspase-9为内源性凋亡相关通路中的关键蛋白酶,PI3K/Akt信号通路可以抑制Caspase-9磷酸化,使Caspase-9失去活性,进而抑制脊髓神经元凋亡[25-26]。经过miR-520c-3p干预后,Bcl-2蛋白表达上升,Caspase-9、FasL的蛋白表达水平下降,脊髓神经元细胞凋亡率降低,进一步提示miR-520c-3p对PI3K/Akt信号通路及其下游相关凋亡因子的影响。此外,使用LY294002单药处理虽可抑制PI3K激酶活性,但可能激活mTORC2介导的Akt代偿性磷酸化,不过miR-520c-3p可直接结合PIK3CA 3’UTR的保守位点,阻断PI3K催化亚基表达,达到抑制Akt磷酸化的效果,以此来放大抑制效应。miR-520c-3p与LY294002联用显著降低细胞凋亡率,两者的协同效应可能源于miR-520c-3p抑制PIK3CA表达,降低PI3K基础活性,增强抑制剂敏感性;miR-520c-3p还可能通过靶向其他凋亡相关基因,与PI3K/Akt通路形成协同调控网络,还需进一步实验验证。
本研究发现miR-520c-3p靶向PIK3CA,下调PI3K蛋白表达,抑制Akt磷酸化,通过抑制PI3K/Akt轴的信号传导降低促凋亡因子FasL、Caspase-9的表达,并上调抗凋亡蛋白Bcl-2,抑制脊髓神经元细胞凋亡。目前本研究仍存在一定的不足,该结论只基于体外模型进行验证,后续研究可构建大鼠脊髓损伤模型验证体内疗效筛选miR-520c-3p的全基因组靶标。
利益冲突声明:本文所有作者均声明不存在利益冲突。
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Effect of miR -520c -3p targeting PIK3CA to regulate the PI3K/Akt signaling pathway on spinal cord neuronal cell
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